1．通過腹腔注射濃度為1．25％（w/v）的阿佛丁來麻醉小鼠。
2．打開胸腔并暴露心臟。
3．用10ml的DMEM或PBS來灌注小鼠。
4．連同一個或多個對照器官一起，取出要研究的器官和組織，并將其置于一個直徑為30m的細胞培養皿中。
5．用無菌刀片將每個器官或組織都切碎。
6．將切碎的器官或組織放到2．2m1的無菌塑料管中，并加入1．8m1 0．5mg/m1的膠原酶?；靹虿⒃?7℃搖瓶孵育30分鐘。在37℃培養時，持續搖動樣品。
7．以1500r/min的速率短暫離心細胞懸液5分鐘，并棄去上清。
8．將每份用膠原酶處理過的器官或組織放到70txm的尼龍細胞濾網上，并把懸液過濾到50m1錐形瓶中。加入10ml含1％BSA的DMEM到細胞濾網頂部，讓細胞都過濾到50m1錐形瓶中，加兩次。這使得細胞懸液的總量為20ml。在臺式臨床離心機中，以1500r/min離心5分鐘沉淀細胞。丟棄上清，并用20m1含1％BSA的DMEM洗滌沉淀兩次。
9．第6～8步也可用DAKO’s MediMachine制備來自器官或組織的單細胞懸液。將每份器官或組織分別放入50/1m的Medicon中，并置于MediMachine中打散2分鐘。用1ml的LHer注射器抽出Medicon中的細胞懸液，并通過?0gm的Filcon把單細胞懸液過濾到14m1的錐形瓶中。將1m1含1％BSA的DMEM加到MediCOn的小室中，并重復打散和抽濾的步驟。將整個循環重復3次。在臺式臨床離心機中，細胞懸液以1500r/min離心5分鐘。棄去上清，并保留細胞沉淀。
10．用1ml含1％BSA的DMEM重懸來自第8步或第9步的細胞，并在光學倒置顯微鏡下用Neubauer-ruled血球計數板來計數。
11．將每份器官或組織的細胞懸液都取出一部分，使得每個1．7ml塑料管中細胞總量約為1×107個。
12．將細胞在冰上放置5分鐘。
13．把109～1010TU或pfu的噬菌體加到細胞中，并加入含1％BSA的DMEM使其總體積為0．5～1ml。根據需要可以采用體積更大的噬菌體。
14．將噬菌體和細胞一起在4℃孵育30分鐘至過夜。低溫會阻止對所有已結合的噬菌體的內吞作用。 當檢測單克隆時，我們采用較短的時間，而當篩選不同的初的文庫時，則采用較長的時間。
15．細胞懸液以5000r/min的速率短暫離心2～3分鐘，并棄去上清。
16．用含1％BSA的DMEM重懸細胞，輕輕吹打。以5000r/min的速率短暫離心細胞2—3分鐘，并棄去上清。再重復此操作3次，共洗滌4次。zui終，第5次用含1％BSA的DMEM重懸細胞沉淀，將其轉入一個新的2．2m1無菌塑料管中。以5000r/min短暫離心細胞2～3分鐘，并棄去上清。

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